公司產品僅供科研研究使用、不得用于臨床診斷！

保存條件：本試劑盒在室溫儲存 12 個月不影響使用效果。

產品介紹：
結合液/蛋白酶 K 迅速裂解細胞和滅活細胞內核酸酶，然后基因組 DNA 在 高離序鹽狀態下選擇性吸附于離心柱內硅基質膜，再通過一系列快速的漂洗－離心的 步驟，抑制物去除液和漂洗液將細胞代謝物、蛋白等雜質去除，最后低鹽的洗脫緩沖 液將純凈基因組 DNA 從硅基質膜上洗脫。
產品特點：
1.重復性好:離心吸附柱內硅基質膜全部采用進口特制吸附膜，柱與柱之間吸附量差異極小。克服了國產試劑盒膜質量不穩定的弊端。
2.多次柱漂洗確保高純度，OD260/OD280 典型的比值達 1.7～1.9，長度可達 30kb -50kb，可直接用于 PCR，Southern-blot 和各種酶切反應。
注意事項：
1.結合液 CB 或者抑制物去除液 IR 低溫時可能出現析出和沉淀，可以在 37℃水浴幾分 鐘幫助重新溶解，恢復澄清透明后冷卻到室溫即可使用。

 2.避免試劑長時間暴露于空氣中產生揮發、氧化、pH 值變化。
 3.結合液 CB 和抑制物去除液 IR 中含有刺激性化合物，操作時要戴乳膠手套，避免沾染皮膚，眼睛和衣服。若沾染皮膚、眼睛時，要用大量清水或者生理鹽水沖洗。

4.洗脫液 EB 不含有螯合劑 EDTA，不影響下游酶切、連接等反應。也可以使用水洗脫， 但應該確保批 pH 大于 7.5，pH 過低影響洗脫效率。用水洗脫 DNA 應該保存在-20℃。 DNA 如果需要長期保存，可以用 TE 緩沖液洗脫（10mM Tris-HCl，1mM EDTA，pH 8.0），但是 EDTA 可能影響下游酶切反應，使用時可以適當稀釋。
自備試劑：無水乙醇、1xPBS 緩沖液、RNase A（10mg/ml）（RNase A(10 mg/ml) 有售）。
操作步驟：
提示：第一次使用前請先在漂洗液 WB 中加入定量無水乙醇，充分混勻，加入后請及時在方框打鉤標記已加入乙醇，以免多次加入!
如果需要去除 RNA，可在加蛋白酶 K 溶液前先加入 4μl RNaseA（10mg/ml）溶液振蕩 15sec，室溫放置 5 min

1.組織培養細胞
a. 收集約 105-10
6懸浮細胞到一個 1.5ml 離心管；對于貼壁細胞，應該先用胰蛋白消化后吹打下來收集。
b. 12,000rpm 離心 10 sec，使細胞沉淀下來。棄上清，留下細胞團和大約 10-20μl殘留的液體。
c. 加 200μl 1×PBS 重懸洗滌細胞，12,000rpm 離心 10 sec，使細胞沉淀下來。棄上清, 將細胞沉淀重懸于 180μl 1XPBS 中。
d. 加入 20μl 蛋白酶 K (20mg/ml)溶液，充分混勻（可選步驟：為清除 RNA，加入 5µl RNase A（10mg/ml），振蕩混勻，可選擇室溫放置 5min），再加入 200μl結合液 CB，立刻渦旋振蕩充分混勻，在 70℃放置 10 min。
e. 冷卻后入 200μl 無水乙醇，立刻渦旋振蕩充分混勻，此時可能會出現絮狀沉淀。
f. 將上一步混合物（包括可能有的沉淀）加入吸附柱 AC 中，（吸附柱放入收集管中）12,000rpm 離心 1 min，倒掉收集管中的廢液。
g. 按操作步驟 4 繼續后續的實驗。
2.動植物組織（例如鼠肝腦或者植物葉片）
a. 新鮮或者解凍的組織在液氮中研磨成細粉后或者用解剖切成小碎塊（切成微塊可以提高產量）后取 20-50mg，轉入裝有 180μl 組織裂解液 TL 的 1.5ml 離心管中， 用大口徑槍頭吹打混勻。
b. 加入 20μl 的蛋白酶 K 溶液(20mg/ml)，立刻渦旋振蕩充分混勻。
c. 將裂解物放置在 55℃水浴 1-3 小時或者直到組織消化全，期間輕柔的振蕩幾次幫助裂解。為清除 RNA，加入 5µl RNase A（10mg/ml），振蕩混勻（可選擇室溫放置 5 min）。
d. 加入 200μl 結合液 CB，立刻渦旋振蕩充分混勻，70℃放置 10 min。
e. 冷卻后加入 200μl 無水乙醇，立刻渦旋振蕩充分混勻，此時可能會出現絮狀沉淀。
f. 用 1ml 的槍頭吸取混合物，將混合物加入一個吸附柱 AC 中，（吸附柱放入收集管中）12,000rpm 離心 1 min，倒掉收集管中的廢液。
g. 按操作步驟 4 繼續后續的實驗。
3.動物組織（鼠尾）
a.將 0.2-0.5cm 的鼠尾巴尖(即 20-50mg)剪碎（一定要剪 0-2cm 范圍內的尾巴尖，否則裂解效果不好），或者在液氮中研磨組織成細粉后，轉入裝有 180μl 組織裂解液 TL 的 1.5ml 離心管中， 用大口徑槍頭吹打混勻。
b.加入 20μl 的蛋白酶 K(20mg/ml)，立刻渦旋振蕩充分混勻。
c.將裂解物放置在 55℃水浴 3 小時或者直到組織消化全，期間輕柔的振蕩幾次幫助裂解。為清除 RNA，加入 5µl RNase A（10mg/ml），振蕩混勻（可選擇室溫放置 5 min）。
d.用一個 1ml 不帶針頭的一次性輸液抽打裂解物 2-3 次。
e.加入 200μl 結合液 CB 和 200μl 無水乙醇，立刻渦旋振蕩充分混勻。
f.12,000rpm 離心 5 min，將上清加入一個吸附柱 AC 中，（吸附柱放入收集管中）12,000rpm 離心 30-60 sec，倒掉收集管中的廢液。
g.按操作步驟 4 繼續后續的實驗。
4.加入 500μl 抑制物去除液 IR，12,000rpm 離心 30 sec，棄廢液。
5.加入 500μl 漂洗液 WB（請先檢查是否已加入無水乙醇!），12,000rpm 離心 30 sec，棄掉廢液。
6.重復操作步驟 5。
7.將吸附柱 AC 放回空收集管中，12,000rpm 離心 2 min，將吸附柱置于室溫放置數分鐘，以晾干吸附材料中殘余的漂洗液, 以免漂洗液中殘留乙醇抑制下游反應。
8. 取出吸附柱 AC，放入一個干凈的離心管中，在吸附膜的中間部位加 50-100 洗脫緩沖液 EB（洗脫緩沖液事先在 65℃水浴中預熱效果更好），室溫放置 3-5 min，12,000rpm 離心 1 min。為了增加基因組 DNA的得率，將得到的溶液重新加入離心吸附柱中，室溫放置 2 min，12,000rpm 離心 1 min。(注意: DNA 產物應保存在-20℃，以防 DNA降解。)

PCR 反應需要使用哪些試劑和設備？

試劑:
模板DNA：PCR反應需要模板DNA，如從細胞、組織、血液中提取DNA等；引物：PCR反應的兩個引物，分別與模板DNA的兩端配對擴增所需的特定區域，引物也可以合成為TA克隆等過程中使用到的引物；dNTPs：PCR反應中需要四種dNTPs，包括脫氧腺苷酸（dATP）、脫氧胸苷酸（dCTP）、脫氧鳥苷酸（dGTP）、脫氧胞嘧啶酸（dTTP），用于細胞分裂、DNA合成等生物學過程，用于PCR擴增的模板DNA鏈的延伸和擴增；Taq DNA聚合酶：PCR反應需要的聚合酶，一般使用Taq聚合酶，還有一些其他種類的聚合酶如PFU、Phusion等，用于擴增DNA鏈；PCR buffer溶液：對PCR反應具有緩沖作用，調節反應pH，硫代硫酸氫鹽SDS、小分子有機化合物如甲醛，可增強PCR反應特異性，從而提高反應效率；酶切體系：PCR擴增往往涉及到重組、構建和測序等等實驗步驟，常常需要進行酶切操作。MARK:一種分子量標準，用來判別DNA片段大小的工具。DNA純化試劑盒：用于純化PCR反應產物；
設備：
PCR儀：用于控制反應溫度，保證PCR反應時不同溫度環節的嚴格控制；電泳槽：用于分離PCR擴增產物；核酸提取儀：從組織樣本中全自動提取核酸。  這些試劑和設備在PCR分子生物學技術中均是，只有在有序齊全的基礎上，才能進行PCR反應并得出準確結果。

PCR相關基礎實驗：

PCR反應基本步驟一般的聚合酶鏈式反應由20到35個循環組成，每個循環包括以下3個步驟：

一、變性：

利用高溫（93-98℃）使雙鏈DNA分離。高溫將連接兩條DNA鏈的氫鍵打斷。在第一個循環之前，通常加熱長一些時間以確保模板和引物分離，僅以單鏈形式存在。該步驟時間1-2分鐘，接下來PCR儀就控制溫度進入循環階段。

二、退火或稱接合,復性：

在DNA雙鏈分離后，降低溫度使得引物可以結合于單鏈DNA上。此階段的溫度通常低于引物熔點5℃。錯誤的退火溫度可能導致引物不與模板結合或者錯誤地結合。該步驟時間1-2分鐘。

三、延伸：

DNA聚合酶由降溫時結合上的引物開始沿著DNA鏈合成互補鏈。此階段的溫度依賴于DNA聚合酶。該步驟時間依賴于聚合酶以及需要合成的DNA片段長度。傳統的Taq估計合成1000bp/min、較新的Tbr（來自于嗜熱菌Thermus brockianus）約40秒、商業公司生產的融合型聚合酶僅需約10-15秒。

PCR反應條件優化：

1、變性溫度和時間：

保證模板DNA解鏈是保證整個PCR擴增成功的關鍵。加熱90~95°C, 30~60s，再復雜的DNA 分子也可變性為單鏈。溫度過高或高溫持續時間過長，可對Taq酶活性和dNTP分子造成損害。

2、復性溫度和時間:

PCR擴增特異性取決于復性過程中引物與模板的結合。復性溫度越高，產物特異性越高。復性溫度越低，產物特異性越低。需根據引物的Tm值具體設定。

3、延伸溫度和時間:

一般位于Taq酶最適作用溫度70~75°C之間。引物小于16個核苷酸時，過高的延伸溫度不利于引物與模板的結合，可以緩慢升溫到70~75°C。延伸反應時間，可根據待擴增片段的長度而定，小于1kb, 1min足夠；大于1kb需加長延伸時間。Taq酶可根據1kb/min增加時間。這里需要注意，延伸時間過長可能出現非特異擴增。因此需要設置恰到好處的延伸時間。

4、循環數:

其他參數選定后，PCR循環次數主要取決于模板DNA的濃度。理論上說20?25次循環后，PCR產物的積累即可達到最大值，實際操作中由于每步反應的產率不可能達到100%，因此不管模板濃度是多少，20~30次是比較合理的循環次數。循環次數越多，非特異擴增增加。

公司正在出售的產品：